Перитонит у кошки
Перитонит у кошек – это воспаление брюшины, которая выстилает брюшную полость и покрывает находящиеся в ней внутренние органы .
Данное заболевание, как и перитонит у человека, при неоказании своевременной экстренной ветеринарной помощи приводит к смертельному исходу.
Причины. Перитонит у кошки может быть в результате механического повреждения желудка и кишечника, язвенной болезни желудка, при новообразованиях в брюшной полости. Иногда причиной перитонита у кошки является проникновение патогенных микроорганизмов при микротравмах кишечника во время прохождения по кишечнику волосяных шаров и твердых каловых масс. Послеоперационный перитонит у кошки развивается в результате хирургического вмешательства в области брюшной полости.
Послеоперационный перитонит у кошек возникает по причине инфицирования брюшной полости во время проведения хирургического вмешательства и после него. Инфекция проникает при несоблюдении специалистами правил асептики и антисептики, при повреждении в процессе операции близлежащих внутренних органов (кишечника, мочевого пузыря), при вскрытии абсцессов. Перитонит у кошки также может возникнуть в результате проникновение патогенных микроорганизмов через послеоперационные швы. Причиной данной формы перитонита нередко являются хирургические ошибки во время операции (недостаточная санация брюшной полости, оставление в полости салфеток и других материалов, неправильно наложенный шов). К послеоперационному перитониту может привести низкий иммунитет у животного.
Бактериальный перитонит возникает у кошки в результате попадания бактерий в брюшную полость с мочой, содержимым желудка, желчью или кровью. В результате размножения бактерий у кошки в брюшной полости развивается сильный перитонит. Одной из причин возникновения данного вида перитонита является повреждение стенки желудка острыми предметами или грубой пищей содержащей косточки. Бактериальный перитонит может возникнуть из-за язвы или опухоли органов брюшной полости.
Вирусный перитонит – вызывается чаще мутированным корановирусом, который попадает в организм кошки воздушно-капельным путем при контакте с больным животным. Заболевание у кошки протекает с перитонитом, лихорадкой, дегидратацией тканей, отеками брюшной полости и отказом кошки от корма. Данное заболевание у кошки протекает в трех формах – экссудативной (влажной), пролиферативной (сухой) и у большинства кошек заболевание протекает бессимптомно. Более подробно об вирусном перитоните смотрите в нашей статье – инфекционный перитонит кошек.
Клиническая картина. У кошки владельцы отмечают потерю аппетита, вплоть до полного отказа от корма, кошка становится вялой, появляется рвота (рвота у кошек), диарея (понос у кошки). В результате рвоты и поноса кошка резко теряет массу тела. У кошки повышается температура тела, появляется лихорадка. В результате скопления жидкости в брюшной полости происходит вздутие живота (метеоризм у кошек), при пальпации живота кошка реагирует болезненно. У некоторых кошек ветеринарные специалисты отмечают наличие плеврита, нарушения со стороны сердца, почек и печени; нарушение координации, судороги и параличи задних конечностей. При бактериальном и вирусном перитоните у больного животного наблюдается конъюнктивит (у кошки гноятся глаза, что делать?)
Диагноз. Диагноз на перитонит у кошки ветеринарные специалисты ставят на основании клинической картины, УЗИ и рентгенологического обследования области живота, биопсии, лапароскопии брюшной полости.
Дифференциальный диагноз. Перитонит у кошки необходимо дифференцировать от асцита, токсоплазмоза, травм, опухолей (онкология у кошек), сердечно-сосудистых заболеваний. Сухой перитонит от туберкулеза.
Лечение. Консервативное лечение перитонита у кошки проводится комплексно. Больной кошке назначают обезболивающие препараты –спазган, баральгин и т.д.
При вирусном перитоните специфическая терапия отсутствует, лечение будет направлено на профилактику возможных бактериальных осложнений, уменьшение боли и укрепление иммунной системы. Положительные результаты дает применение глюкокортикоидов (преднизолон). Больной кошке назначают витамины, интерферон, иммуноглобулин.
При бактериальном перитоните проводится антибактериальная терапия. Кошке назначаются антибиотики цефалоспориновой и пенициллиновой группы, а также сульфаниламидные препараты.
При сухой форме инфекционного перитонита применяют антибактериальную терапию, обезболивающие препараты, иммуномодуляторы. Для снижения общей интоксикации организма животному назначают внутривенные инъекции физиологического раствора, глюкозы. При сердечно-сосудистой симптоматике назначаются препараты, уменьшающие проявления сердечной недостаточности.
В случае гнойного перитонита, помимо интенсивной антибактериальной терапии в специализированном учреждении, проводится откачивание скопившегося экссудата из брюшной полости. Прокол и удаление жидкости позволяет уменьшить дискомфорт и болезненность у питомца.
Профилактика. Профилактика перитонита складывается из общих мер профилактики — полноценное, сбалансированное кормление. Периодическая обработка от глист и блох у кошек, клещей. Во время прогулки избегать контакта с бродячими животными. Избегать применения гормональных препаратов. Повышать иммунитет. Выполнять рекомендации ветеринарных специалистов по послеоперационному уходу. Исходя из того, что вирус малоустойчив и легко уничтожается простыми дезинфицирующими средствами, рекомендуется применять нашатырный спирт или разведенный водой (1:32) отбеливатель, владельцы должны регулярно проводить дезинфекцию помещения для кошек.
Источник
Новое в лечении кошачьего инфекционного перитонита
Ключевые слова: влажная форма кошачьего инфекционного перитонита, фосфорилированные полипренолы, FIP
Сокращения: АлАТ — аланинаминотрансфераза, АсАТ — аспартатаминотрансфераза, АТФ — аденозинтрифосфат, в/в — внутривенно, в/м — внутримышечно, ГГТ — гамма-глутамилтранспептидаза, ГЛДГ — глутаматдегидрогеназа, ИЛ — интерлейкин, ИФН — интерферон, ЛДГ — лактатдегидрогеназа, МЕ — международная единица, п/к — подкожно, ПЦР — полимеразная цепная реакция, СДГ — сорбитолдегидрогеназа, СОЭ — скорость оседания эритроцитов, УЗИ — ультразвуковое исследование, ЧСС — частота сердечных сокращений, ЩФ — щелочная фосфатаза, ЭКГ — электрокардиография, ЭОС — электрическая ось сердца, FIP — feline infectious peritonitis (кошачий инфекционный перитонит), fL — фемтолитр, PI — рolyprenyl immunostimulant (иммуномодулятор на основе фосфорилированных полипренолов шелковицы)
Несмотря на значительный прогресс в ветеринарной медицине, FIP остается одним из самых загадочных, опасных и неизлечимых заболеваний. Ранее в редакционной статье [3] сообщалось о выступлении доктора Альфреда Лежандра на состоявшемся в 2011 г 33-м ежегодном симпозиуме Winn Feline Foundation, посвященном проблеме лечения FIP. В докладе речь шла об особенностях и перспективах применения PI в качестве единственного средства этиотропной терапии сухой формы FIP. Всего PI применяли при лечении 102 кошек с сухой формой FIP, причем почти 20 % пациентов продолжают жить более года после начала лечения. У них отмечено улучшение общего состояния и качества жизни. В нашей стране также делались попытки терапии FIP при использовании в качестве этиотропных средств фосфорилированных полипренолов различного происхождения — фоспренила и гамапрена [3, 4]. В настоящей статье описаны случаи лечения влажной формы FIP с использованием оригинальной комплексной методики, разработанной ветеринарным врачом И.О. Переслегиной.
Описание клинических случаев
Клинический случай № 1. Осенью 2011 г. на прием поступил пациент — кот Персик, возраст 1 год, порода русская голубая. Жалобы владельцев: кота привезли с дачи, через две недели заметили, что он худеет. Поноса нет, аппетит сохранен. Были отмечены судороги, кот временами задыхается.
Клинические исследования. При пальпации установлено: живот увеличен, при подъеме за передние лапы жидкость переливается вниз, что придает животу грушевидную форму. Отмечена тахикардия (пульс 140-152 уд/мин), тоны сердца жесткие, аритмия.
При ЭКГ определен эктопический нерегулярный ритм; ЧСС: среднее значение — 209 уд/мин, максимальное — 230 уд/мин, минимальное — 187 уд/мин; отклонение ЭОС влево, блокада левой ножки пучка Гиса, гипертрофия левого предсердия.
При УЗИ обнаружено: скопление в брюшной полости 35-45 мл жидкости, структура печени неоднородная, повышенной зернистости, эхогенность L = 82. 85 (норма 65. 68), печень выступает за край реберной дуги (увеличена). Края печени ровные, острые. Желчный пузырь в форме песочных часов (с перетяжкой в середине), умеренно наполнен, осадка в просвете нет. Поджелудочная железа увеличена (в норме не удается визуализировать), уплотнена, структура нарушена. Почки без выраженных изменений. Мочевой пузырь наполнен, стенки тонкие, в просвете мелкие эхогенные образования, не отбрасывающие акустической тени.
Кровь из вены отдали на клинический и биохимический анализы (табл. 1). Выявлено резкое увеличение уровня глобулинов, драматическое снижение соотношения альбумин/глобулин на фоне умеренной анемии и гипербилирубинемии. Отмечено существенное повышение активности ферментов СДГ, ГЛДГ, АсАТ, АлАТ, ГГТ, ЛДГ и ЩФ. Кроме того, кровь и выпотную жидкость исследовали на FIP с помощью метода ПЦР (наличие коронавируса FIP подтвердилось в обоих случаях).
Поставлен предварительный диагноз — влажная форма FIP.
Терапия. Коту медленно промыли кишечник отваром ромашки, затем ввели per rectum 5 мл фоспренила (глубоко, на 8 см), подогретого до 40°С. Через 2 ч процедуру повторили. Затем дали еще 3 мл теплого фоспренила per os и продолжали давать его каждые 2 ч в течение ночи.
На следующий день схема терапии была такова: ветранквил — 0,3 мл в/м, фоспренил — 1,5 мл в/м, гептрал — 1,5 мл в/м; АТФ — 0,4 мл (на растворе Рингера) в/в, хлорид кальция — 0,5 мл (на физрастворе) в/в, тиосульфат натрия — 1,0 мл (на физрастворе) в/в, траумель — давали каждый час per os по 1,0 мл, фосфор гомаккорд 1,0 мл в/в; пумпан 5 капель 4 раза в день (в водном растворе) per os.
На 3-й день: ветранквил 0,3 мл в/м, панангин 0,8 мл в/в, рибоксин 1,0 мл в/в, АТФ 0,4 мл в/в, раствор Рингера 50,0 мл в/в. В брюшину ввели 20,0 мл физраствора (катетер расположили с левой стороны от белой линии, отступив 2-3 см от ребра), затем в течение 10-15 мин кота аккуратно переворачивали с бока на бок и массировали ему живот. Откачанная жидкость была характерна для влажной формы FIP: соломенного цвета, без запаха, достаточно вязкая, сильно пенящаяся, слегка опалесцирующая, с белыми хлопьями; общий объем жидкости (учитывая введенный физраствор) — около 65 мл. Сразу после этого в брюшину с помощью 2 разных шприцов были введены теплые (40°С) растворы по 20 мл: фоспренил с физраствором (10:10) и диоксидин 0,5% с физраствором (10:10). В вену дополнительно инъецировали еще 2 мл траумеля. Поставили клизму с фоспренилом, дополнительно в/в ввели метронидазол, в/м бициллин-3, в/м гептрал, фуросемид 0,3 мл в/м. Траумель назначали 4 раза в день по 1,0 мл п/к.
После окончания манипуляций пациент чувствовал себя нормально, через 1 ч даже проявил некоторую активность (поиграл).
В течение двух следующих дней пациента лечили по схеме:
утро (все препараты давали в тех же дозировках, что накануне) — АТФ в/в, траумель п/к, ветранквил в/м, панангин в/в, рибоксин в/в, гептрал в/м, фосфор гомаккорд п/к, тиосульфат натрия в/в, контрикал 5000 ед. в/в, пумпан 5 капель 3 раза в день, фоспренил 3,0 мл per os 3 раза в день, фоспренил в клизме после ромашки (теплый) 5,0 мл;
вечер — гамавит 2,0 мл в/в, траумель 1,0 мл п/к, гептрал 1,5 мл в/м, маннитол 10,0 мл в/в, фоспренил в клизме (теплый) 5,0 мл.
Состояние пациента было стабильным, аппетит сохранен, температура 39. 39,3°С.
На третий день в брюшной полости снова скопилась жидкость. Повторили процедуру с проколом брюшной полости. Объем асцита уменьшился до 40 мл вместе с физраствором. Манипуляции повторены.
В схему лечения добавили кардус и берберис (по 1,0 мл п/к). Судороги прекратились. Фосфор гомаккорд назначен 1 раз в три дня по 1,0 мл п/к. Живот уменьшился в объеме, при пальпации жидкость не выявлялась. Кот активно питался. Тиосульфат натрия отменен, доза маннитола снижена до 5,0 мл (очень активное мочеотделение).
К вечеру четвертого дня отмечено: жидкости в брюшной полости осталось всего около 20 мл по оценкам УЗИ. Ввели 10 мл физиологического раствора, вышло чуть больше 20 мл. Жидкость намного светлее, хлопьев нет. Пенилась намного меньше, вязкость также уменьшилась. Введен теплый фоспренил — 10 мл.
Терапия на следующей неделе включала в себя АТФ 0,4 мл в/в 7 дней; фоспренил 3,0 мл per os 3 раза в день; фоспренил 5,0 мл в клизме 1 раз в день (теплый); затем наринэ-форте (согрет в руке) 3,0 мл через 1 ч в клизме; рибоксин 1 мл 2 раза в день в/в; панангин 1, 5 мл в/в 1 раз в день; фосфор гомаккорд 1,0 мл п/к 1 раз в день (3 дня); мукоза композитум 1,0 мл п/к через день (2 недели); берберис 1,0 мл п/к 3 раза в неделю; хелидониум 1,0 мл п/к 3 раза в неделю; гамавит 1 мл п/к 2 раза в день (до 10 дней); пумпан 5 капель 3 раз в день 1 мес; бициллин 3600 тыс. ед.; контрикал 5 тыс. ед. на физрастворе (довести до 10 инъекций в/в); траумель по 1/2 табл. 2 раза в день натощак.
Через неделю сделаны повторные анализы крови (см. табл. 1): показатели, в том числе СОЭ, нормализовались, содержание гемоглобина увеличилось. Асцитная жидкость в брюшной полости отсутствовала, пациент чувствовал себя хорошо.
Данные на начало 2013 г.: кот активен и хорошо себя чувствует. Очередной анализ крови сделан 17.01.2013, то есть через 15 мес после постановки диагноза. Как видно из представленных в таблице 1 данных, практически все показатели находятся в пределах нормы.
| 1.Данные клинического и биохимического анализов крови кота Персика (клинический случай №1) | ||||
| Параметр | Данные пациента | Норма | ||
| При поступлении | Через неделю | Через 15 месяцев | ||
| Клинический анализ | ||||
| Лейкоциты, тыс./мкл | 27,8 | 17,1 | 9,4 | 5,5. 19,5 |
| Эритроциты, млн/мкл | 4,3 | 7,07 | 7,1 | 6,6. 9,4 |
| Гемоглобин, г/л | 76 | 110 | 83 | 80. 150 |
| Гематокрит, % | 22,1 | 51,5 | 33,5 | 30. 45 |
| Тромбоциты, •10 9 /л | — | 455 | 221 | 150. 400 |
| СОЭ, мм/ч | 15,7 | 5,5 | 2,5 | 2,5. 3,5 |
| Средний объем эритроцитов, fL | — | 72,8 | 47,3 | 41. 56,2 |
| Среднее содержание гемоглобина в эритроците, пг | — | 15,5 | 11,7 | 11. 17 |
| Средняя концентрация гемоглобина в эритроците, Г/дл | — | 21,3 | 24,7 | 19,5. 34,8 |
| Анизоцитоз эритроцитов, % | — | 9,2 | 7,5 | 8,3 ±0,87 |
| Лейкограмма, %: базофилы эозинофилы миелоциты юные палочкоядерные сегментоядерные лимфоциты моноциты | 0 5 0 1 8 51 32 3 | 0 3 0 0 9 68 19 1 | 0 5 0 1 7 48 37 2 | 0. 1 2. 8 0 0. 1 3. 9 40. 68 36. 51 1. 5 |
| Биохимический анализ | ||||
| Общий белок, г/л | 98 | — | 78,8 | 59. 78 |
| Альбумин, г/л | 40 | — | 41,5 | 34. 40 |
| Глобулин, г/л | 89 | — | — | 25. 37 |
| Альбумин/глобулин | 0,44 | — | — | 0,7. 1,9 |
| Глюкоза, ммоль/л | 8 | — | 1,98 | 3,33. 4,4 |
| Бикарбонат, ммоль/л | 19 | — | 23,7 | 18,1. 24,5 |
| Щелочной резерв, об% СО2 | 54 | — | 51,3 | 46. 51 |
| СДГ, МЕ/л | 11 | — | 3,8 | 3,1. 7,6 |
| ГЛДГ, МЕ/л | 234 | — | 101 | 75. 230 |
| АсАТ, МЕ/л | 51,5 | — | 41,5 | 12. 40 |
| АлАТ, МЕ/л | 86,7 | — | 74,8 | 28. 76 |
| Коэффициент Ритиса | 0,59 | — | 0,6 | 0,6 ± 0,2 |
| ЩФ, МЕ/л | 92 | — | 87 | 0. 62 |
| ГГТ, МЕ/л | 11 | — | 15,3 | 2,5 10,5 |
| ЛДГ, МЕ/л | 212 | — | 103 | до 193 |
| Альфа-амилаза, МЕ/л | 2200 | — | 1710 | до 1650 |
| Аммиак, ммоль/л | 19,0 | — | 40,2 | 15. 40 |
| Креатинин, мкмоль/л | 140 | — | 45 | 44. 138 |
| Мочевина, ммоль/л | 4,1 | — | 3,2 | 5. 10 |
| Натрий, ммоль/л | 201 | — | 195 | 183. 196 |
| Кальций, ммоль/л | 3,0 | — | 2,1 | 1,79. 2,84 |
| Железо, мкмоль/л | 3,8 | — | 5,12 | 3,9. 12,7 |
| Калий, ммоль/л | 4,4 | — | 5,75 | 4,6. 6,1 |
| Хлориды, ммоль/л | 121 | — | 110 | 102. 117 |
| Медь, мкмоль/л | 16,4 | — | 12,3 | 12. 14 |
| Цинк, мкмоль/л | 25,3 | — | 23,7 | 11. 24 |
| Магний, ммоль/л | 0,9 | — | 1,03 | 1,03. 1,42 |
| Фосфор, ммоль/л | 1,45 | — | 1,12 | 0,97. 1,45 |
| Бета-липопротеиды,10 3 г/л | 299 | — | 230 | 250. 280 |
| Холестерин, ммоль/л | 10,1 | — | — | 2,88. 9,23 |
| Липаза, МЕ/л | 402 | — | 104 | 0. 375 |
| Триглицериды, ммоль/л | 1,02 | — | — | 0,24. 0,98 |
| Билирубин, мкмоль/л: общий конъюгированный неконъюгированный | 3,99 0,3 3,69 | — | 4,73 0,31 4,42 | 0. 6,84 0. 1,71 0. 5,13 |
Клинический случай № 2. В сентябре 2008 г. на прием поступила кошка Крыся, метис, возраст 6 мес. По данным анамнеза: кошку привезли из дома отдыха на Украине, где подобрали бездомной. Начала «пухнуть» через 2 недели после приезда в Москву. Владельцы наблюдали понос, который прошел после приема ветома. Пьет мало, играет, для дегельминтизации давали мильбемакс.
Клинические исследования. При осмотре установлено: живот увеличен, круглый. Слизистые оболочки глаз бледные, в ротовой полости цианотичные, температура 39,4°С, аппетит сохранен. При пальпации живота выявлена флюктуация.
Посредством УЗИ в брюшной полости обнаружено значительное количество жидкости (рис. а). Печень не выступает за край реберной дуги, уменьшена в размерах. Структура печени крупнозернистая с диффузной эхонеоднородностью. Эхогенность паренхимы печени L= 45. 50.
При клиническом анализе крови отмечены снижение гематокрита, умеренная анемия (табл. 2): при биохимическом анализе — повышение содержания общего белка, глобулина, мочевины, активности АсАТ, АлАТ, ЩФ, ГГТ, а также резкое снижение соотношения альбумин/глобулин.
В сочетании с клиническими признаками, результаты УЗИ, анализов крови и выпотной жидкости послужили основанием для постановки предварительного диагноза влажной формы FIP.
Терапия. Была назначена терапия, аналогичная той, что в описанном выше клиническом случае.
Повторный прием состоялся 6 октября 2008 г. При УЗИ отмечены такие признаки: печень размером 7,5 см, незначительно выходит за край реберной дуги, однородной эхоструктуры, крупнозернистая, сосуды переполнены кровью. Контур ровный, острый. В брюшной полости небольшое количество жидкости (рис. б). Перистальтика кишечника сохранена.
22 октября по данным УЗИ жидкости в брюшной полости практически не осталось (рис. в).
25 декабря повторный прием — состояние пациента нормализовалось, визуально кошка клинически здорова. Взяты повторные анализы (см. табл. 2).
На 13 февраля 2013 г. пациентка жива, отлично выглядит, бодра и игрива.
Рис. Сонограммы кошки Крыси:
а — на первом приеме 22.09.2008. В брюшной полости значительное количество жидкости;
б — на приеме 06.11.2008. В брюшной полости небольшое количество жидкости; Перистальтика кишечника сохранена;
в — на приеме 22.10.2008. Жидкости в брюшной полости практически не осталось
| 2.Данные клинического и биохимического анализов крови кошки Крыси (клинический случай №2) | ||||
| Параметр | Данные пациента | Норма | ||
| 22.09.2008 | 22.10.2008 | 25.12.2008 | ||
| Клинический анализ | ||||
| Лейкоциты, тыс./мкл | 19 | 40,9 | 33,1 | 5,5. 19,5 |
| Эритроциты, млн/мкл | 4,1 | 4,6 | 5,0 | 6,6. 9,4 |
| Гемоглобин, г/л | — | 41 | 60 | 80. 150 |
| Гематокрит, % | 29 | 23,1 | 30,0 | 30. 45 |
| Средний объем эритроцитов, fL | — | 57,4 | 54,9 | 41. 56,2 |
| Среднее содержание гемоглобина в эритроците, пг | — | 8 | 10 | 11. 17 |
| Биохимический анализ | ||||
| Общий белок, г/л | 85 | 82 | 81 | 59. 78 |
| Альбумин, г/л | 20 | 21 | 27 | 34. 40 |
| Глобулин, г/л | 62 | 61 | 54 | 25. 37 |
| Альбумин/глобулин | 0,32 | 0,35 | 0,5 | 0,7. 1,9 |
| Глюкоза, ммоль/л | — | 3,8 | 4,0 | 3,33. 4,4 |
| Бикарбонат, ммоль/л | — | 18 | 18 | 18,1. 24,5 |
| Щелочной резерв, об% СО2 | — | 45 | 46 | 46. 51 |
| ГЛДГ, МЕ/л | — | 241 | 215 | 75. 230 |
| АсАТ, МЕ/л | 52 | 68 | 49 | 12. 40 |
| АлАТ, МЕ/л | 87 | 92 | 74 | 28. 76 |
| Коэффициент Ритиса | 0,59 | 0,73 | 0,66 | 0,6±02 |
| ЩФ, МЕ/л | 79,8 | 54 | 48 | 0. 62 |
| ГГТ, МЕ/л | 10,2 | 8,9 | 8,1 | 2,5. 10,5 |
| ЛДГ, МЕ/л | — | 60,8 | 61,2 | до 193 |
| Альфа-амилаза, МЕ/л | — | 1570 | 1230 | до 1650 |
| Аммиак, ммоль/л | — | 19,8 | 18,3 | 15. 40 |
| Креатинин, мкмоль/л | — | 131 | 110 | 44. 138 |
| Мочевина, ммоль/л | 6,0 | 8,4 | 3,2 | 5. 10 |
| Натрий, ммоль/л | — | 160 | 151 | 183. 196 |
| Кальций, ммоль/л | — | 1,4 | 1,65 | 1,79. 2,84 |
| Калий, ммоль/л | — | 3,3 | 4,8 | 4,6. 6,1 |
| Хлориды, ммоль/л | — | 129 | 118 | 102. 117 |
| Медь, мкмоль/л | — | 16,9 | 14,1 | 12. 14 |
| Цинк, мкмоль/л | — | 29,2 | 26,4 | 11. 24 |
| Магний, ммоль/л | — | 0,54 | 0,70 | 1,03. 1,42 |
| Фосфор, ммоль/л | — | 2,07 | 2,07 | 0,97. 1,45 |
| Липаза, МЕ/л | — | 320 | 320 | 0. 375 |
| Билирубин, мкмоль/л: общий конъюгированный неконъюгированный | — | 7,9 2,38 5,52 | 6,8 1,91 4,89 | 0. 6,84 0. 1,71 0. 5,13 |
Обсуждение
Экссудативный (влажный) перитонит — наиболее тяжелая клиническая форма FIP, которая обычно довольно быстро, в течение буквально нескольких недель, приводит к летальному исходу. В настоящей статье описаны два случая успешной терапии влажной формы FIP. Диагноз ставили на основании данных клинического осмотра, анализа перитонеального экссудата, а также результатов УЗИ, ПЦР, клинического и биохимического анализов крови. У обоих пациентов выявлен асцит с жидким экссудатом, характерным для влажной формы FIP: жидкость соломенного цвета, без запаха, достаточно вязкая, сильно пенящаяся, слегка опалесцирующая, с белыми хлопьями. При первичном анализе крови обнаружено резкое увеличение содержания глобулинов, а также драматическое снижение соотношения альбумин/глобулин на фоне умеренной анемии и гипербилирубинемии. Кроме того, выявлено существенное повышение активности СДГ, ГЛДГ, АсАТ, АлАТ, ГГТ, ЛДГ и ЩФ. Повышенная концентрация глобулинов в плазме крови наряду со сниженным коэффициентом соотношения альбумин/глобулин служит одним из наиболее стабильно выявляющихся показателей при FIP [2, 5]. В сочетании с клиническими признаками, данными УЗИ, ПЦР, результатами анализа крови и выпотной жидкости это послужило основанием для постановки предварительного диагноза влажной формы FIP.
После вынесения такого диагноза терапия традиционно направлена на снижение деструктивных воспалительных проявлений и облегчение состояния животного. Считается, что влажная форма FIP неизлечима и быстро ведет к смерти пациента.
К признакам ремиссии относят отсутствие или существенное снижение объема перитонеально-плевральной выпотной жидкости, исчезновение или значительное уменьшение клинических симптомов, снижение содержания глобулина, повышение соотношения альбумин/глобулин в крови, нормализация гематокрита и набор массы тела [5, 9].
В процессе терапии обоих пациентов с помощью оригинального подхода, разработанного ветврачом И.О. Переслегиной, удалось достаточно быстро и последовательно добиться достижения всех описанных выше показателей, свидетельствующих о наступлении ремиссии. С особым удовлетворением отмечаем, что оба пациента живы уже в течение более чем длительного срока после установления диагноза влажной формы FIP — 15 мес и 52 мес, соответственно.
Описанная в настоящей статье комплексная методика терапии, хотя и довольно непроста, но полностью воспроизводима (в настоящий момент по этой методике вылечено и продолжает лечиться уже около десятка пациентов). При этом в качестве средства этиотропной терапии использованы предварительно подогретые фосфорилированные полипренолы. Отметим, что ветеринарные препараты на основе фосфорилированных полипренолов, выделенных либо из листьев шелковицы, либо из хвои, изучены в РФ довольно многосторонне. На их основе созданы и широко применяются в ветеринарной практике препараты гамапрен и фоспренил. Показано, что эти препараты обладают как иммуномодулирующим, так и противовирусным действием. Скорее всего, их терапевтический эффект при инфекционном коронавирусном перитоните проявляется комплексно. С одной стороны, эти препараты оказывают противовирусное действие при экспериментальной коронавирусной инфекции, вызванной, например, вирусом гепатита мышей. С другой стороны, после введения в организм при вирусной инфекции фоспренил и гамапрен активируют макрофаги и стимулируют раннюю продукцию ключевых цитокинов (ИЛ-12, ИФН-γ), обеспечивающих формирование Th1 иммунного ответа, которое нарушено при вирусном инфекционном процессе. Это представляется крайне важным с учетом данных о том, что развитие FIP у кошек после заражения коронавирусом напрямую связывают с отсутствием выработки ИЛ-12, необходимого для развития эффективного клеточного иммунного ответа [7]. Более того, при слабом клеточно-опосредованном иммунном ответе, когда наблюдается массовое размножение коронавирусов в макрофагах, заболевание переходит во влажную форму. Это позволяет предположить, что препараты на основе фосфорилированных полипренолов, активирующие макрофагальную активность, можно использовать не только для терапии, но и для профилактики влажной формы FIP. Это особенно важно, поскольку иные рекомендованные способы терапии FIP с использованием ИФН-омега, рекомбинантного кошачьего ИФН, глюкокортикоидов и циклофосфамида показали крайне низкую эффективность [6, 9]. Еще одним, хотя и косвенным свидетельством в пользу эффективности фосфорилированных полипренолов при FIP, служит тот факт, что для этого заболевания характерен феномен антителозависимого усиления вирусной инфекции [10]. Аналогичное явление характерно и для флавивирусных инфекций, при которых препараты на основе фосфорилированных полипренолов особенно эффективны [1].
Что касается данных о ремиссии, достигнутой у кошек при использовании PI, то они получены при терапии только сухой (неэкссудативной) формы FIP [8]. По мнению авторов, PI может рассматриваться как перспективное средство этиотропной терапии сухой формы FIP.
Источник
